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MTT原理
缺點(diǎn):由于MTT經(jīng)還原所產(chǎn)生的甲瓚產(chǎn)物不溶于水,需被溶解后才能檢測。這不僅使工作量增加,也會對實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性產(chǎn)生影響,而且溶解甲的有機(jī)溶劑對實驗者也有損害。
通常,此法中的MTT 濃度為5mg/ml。因此,可以稱取MTT 0.5克,溶于100 ml的磷酸緩沖液(PBS)或無酚紅的培養(yǎng)基中,用0.22μm濾膜過濾以除去溶液里的細(xì)菌,放4℃避光保存即可。在配制和保存的過程中,容器用鋁箔紙包住。實驗的時候我一般關(guān)閉超凈臺上的日光燈來避光,覺得這樣比較好。
需要注意的是,MTT法只能用來檢測細(xì)胞相對數(shù)和相對活力,但不能測定細(xì)胞數(shù)。在用酶標(biāo)儀檢測結(jié)果的時候,為了保證實驗結(jié)果的線性,MTT 吸光度在0-0.7 范圍內(nèi)。
1:接種細(xì)胞:用含10%胎小牛血清得培養(yǎng)液配成單個細(xì)胞懸液,以每孔1000-10000個細(xì)
2: 培養(yǎng)細(xì)胞:同一般培養(yǎng)條件,培養(yǎng)3-5天(可根據(jù)試驗?zāi)康暮鸵鬀Q定培養(yǎng)時間)。
3:呈色:培養(yǎng)3-5天后,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS配制,pH=7.4)20ul.繼續(xù)孵育4 h,
4:比色:選擇490nm波長,在酶聯(lián)免疫監(jiān)測儀上測定各孔光吸收值,記錄結(jié)果,以時間為
貼壁細(xì)胞:
1: 收集對數(shù)期細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞懸液濃度,每孔加入100ul,鋪板使待測細(xì)胞調(diào)密度 1000-
2: 5%CO2,37℃孵育,至細(xì)胞單層鋪滿孔底(96孔平底板),加入濃度梯度的藥物,原則上,
3: 5%CO2,37℃孵育16-48小時,倒置顯微鏡下觀察。
4: 每孔加入20ulMTT溶液(5mg/ml,即0.5%MTT),繼續(xù)培養(yǎng)4h。若藥物與MTT能夠反應(yīng),
5: 終止培養(yǎng),小心吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液。
6: 每孔加入150ul二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10min,使結(jié)晶物充分溶解。在酶聯(lián)免
7: 同時設(shè)置調(diào)零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜),對照孔(細(xì)胞、相同濃度的藥物溶解介
1: 收集對數(shù)期細(xì)胞,調(diào)節(jié)細(xì)胞懸液濃度1×106/ml,按次序?qū)?/span>①補(bǔ)足的1640(無血清)培
3: 每孔加入10 ul MTT溶液(5 mg/ml,即0.5%MTT),繼續(xù)培養(yǎng)4 h。(懸浮細(xì)胞推薦使用
(1) 選擇適當(dāng)?shù)眉?xì)胞接種濃度。
(2) 避免血清干擾:一般選小于10%的胎牛血清的培養(yǎng)液進(jìn)行試驗。在呈色后盡量吸盡孔
(3) 設(shè)空白對照:與試驗平行不加細(xì)胞只加培養(yǎng)液的空白對照。其他試驗步驟保持一致,
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